細胞膜熒光探針是一種親脂性的熒光染料，可以用來染細胞膜和其它脂溶性生物結構進入細胞膜后，本產品在整個細胞膜上擴散，最佳濃度時可以使整個細胞膜染色。在進入細胞膜之前熒光非常弱，當與細胞膜結合后其熒光強度大大增強，細胞膜熒光探針被激發后可以發出綠色的熒光，具有很高的淬滅常數和激發態壽命。可以用標準的 FITC濾光片檢測。
細胞膜熒光探針通常不會明顯影響細胞的生存力，因此被廣泛用于正向或逆向的，活的或固定的神經等細胞或組織的示蹤劑或長期示蹤劑。除了簡單的細胞膜熒光標記外，還可以用于檢測細胞的融合和粘附，檢測發育或移植過程中細胞遷移，通過FRAP(Fluorescence Recovery After Photobleaching)檢測脂在細胞膜上的擴散，檢測細胞毒性和標記脂蛋白等。
細胞膜熒光探針的使用方法：
1、染色液制備：
a、配置DMSO或EtOH 儲存液：儲存液用 DMSO或EtOH配置濃度1～5 mM。
b、工作液制備：用合適的緩沖液（如：無血清培養基，HBSS或PBS）稀釋儲存液，配制濃度為1～5 μM的工作液。
2、懸浮細胞染色：
a、懸浮細胞密度為1×106/mL加入到工作液中。
b、在37 ℃培養細胞2～20分鐘，不同的細胞最佳培養時間不同。
c、染色細胞試管在1000～1500轉離心5分鐘。
d、傾倒上清液，再次緩慢加入預溫37℃的培養液。
e、重復c、d步驟兩次以上。
3、粘壁細胞的染色：
a、使粘壁的細胞在無菌實驗室培養。
b、從培養基中移走蓋玻片，吸走過量培養液，將蓋玻片放在潮濕的環境中。
c、在蓋玻片的一角加入100μL的染料工作液，輕輕晃動使染料均勻覆蓋所有細胞。
d、在37 ℃培養細胞 2～20分鐘，不同的細胞最佳培養時間不同。
e、吸干染料工作液，用培養液洗蓋玻片2～3次，每次用預溫的培養基覆蓋所有細胞，培養5～10分鐘，然后吸干培養基。
4、流式細胞儀檢測：
染色的細胞可以分別用經典的FL1，FL2，FL3和FL4流式細胞儀檢測。
